Biología · 2023
Potencial uso de la biomasa de la microalga haematococcus pluvialis (flotow, 1844) en la producción de bioplástico
Los plásticos son materiales polímeros orgánicos que pueden deformarse hasta conseguir una forma deseada y que ofrece ventajas sobre otros materiales porque es ligero, resistente, económico y duradero. La contaminación por residuos plásticos es uno de los principales problemas medioambientales de nuestro tiempo. Como alternativa a esta realidad, se ha venido innovando en la generación de productos que sean más amigables con el ambiente, tal es el caso de los materiales poliméricos obtenidos a partir de fuentes renovables. Las microalgas son conocidas por su gran potencial para producir metabolitos como proteínas, lípidos, carbohidratos y pigmentos, que tratan de cumplir las funciones de los productos derivados del petróleo, estas características junto con su rápido crecimiento y capacidad de adaptación en diferentes métodos de cultivo las convierten en una alternativa económicamente atractiva para la producción de bioplásticos, por lo tanto la biomasa de microalgas y cianobacterias sin más fraccionamiento se puede utilizar en la producción de bioplásticos, es por eso que esta investigación tiene como objetivo principal, evaluar el potencial de Haematococcus pluvialis como materia prima para la producción de bioplásticos, para ello se determinó la tasa de crecimiento de la microalga Haematococcus pluvialis expuesta a medio Bold y fertilizantes agrícolas NPK (T-15), asi mismo se estimó la producción de a triacilglicerol a partir de la biomasa de la microalga y se evaluó el potencial uso de la biomasa microalgal de H. pluvialis en la producción de bioplásticos. Los parámetros cinéticos de crecimiento, señalaron diferencias significativas en la velocidad especifica de crecimiento y el tiempo de duplicación, entre los medios de cultivo utilizados; además, es posible obtener una película bioplástica utilizando la biomasa de la microalga H. pluvialis, cultivada en medios analíticos como el medio Bold o de uso agrícola como NPK (T-15)
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Contenido
- RESUMENp. 14
- ABSTRATCp. 15
- INTRODUCCIÓNp. 16
- OBJETIVOSp. 18
- Objetivo generalp. 18
- Objetivos específicosp. 18
- MARCO REFERENCIALp. 19
- Generalidades de las Microalgasp. 19
- Cultivo de microalgasp. 20
- Metabolismo y crecimiento industrial de las microalgasp. 20
- Parámetros de la producción de microalgasp. 21
- Parámetros de cultivop. 21
- Crecimiento de las microalgasp. 23
- Métodos de separaciónp. 24
- Extracción de lípidosp. 25
- Extracción con disolventes químicosp. 25
- Haematococcus pluvialisp. 26
- Aplicaciones de las microalgasp. 29
- Triacilglicerolesp. 29
- Bioplásticosp. 18
- Fertilizantesp. 31
- NPKp. 33
- Antecedentesp. 33
- METODOLOGÍAp. 35
- Localizaciónp. 35
- Preparación del medio de cultivop. 36
- Condición inicial del cultivop. 37
- Preparación de los cultivos masivosp. 38
- Conteo de densidad celular de Haematococcus pluvialisp. 40
- Obtención de la biomasa algalp. 42
- Centrifugación de la biomasap. 43
- Secado de la biomasap. 43
- Destrucción mecánicap. 44
- Extracciónp. 44
- Determinación del porcentaje de extracciónp. 46
- Producción del bioplasticop. 46
- Preparación del compatibilizadorp. 46
- Preparación del rellenop. 46
- Preparación de la película bioplasticap. 47
- Pruebas bioplasticop. 47
- Análisis de datosp. 48
- RESULTADOSp. 49
- Densidad celularp. 49
- Tasa de crecimiento y tiempo de duplicaciónp. 50
- Extracción de aceitesp. 52
- Producción del bioplasticop. 46
- Pruebas bioplasticop. 53
- DISCUSIÓNp. 55
- Parámetros de crecimientop. 55
- Extracción de aceitesp. 52
- Producción del bioplasticop. 46
- CONCLUSIONESp. 59
- 10. RECOMENDACIONESp. 60
- 11. ANEXOSp. 69
- (AlgaeBase,2022)p. 28
- Tabla 2. Nutrientes del medio Bold para el cultivo de microalgas (Star y Zeikus, 1993)p. 36
- de 2880horasp. 50
- Figura 1 . Fase de crecimiento y desarrollo de las microalgas. (Farías, 2011)p. 23
- Figura 2. Sistema de extracción Soxhlet. (Luque & Priego, 2010)p. 26
- Figura 3. Haematococcus pluvialis. Fuente: algaebasep. 27
- f. Aplanóspora (Bauer y Minceva, 2021)p. 28
- Nuñez (2019)p. 35
- Figura 6. Preparación de medio de cultivo Bold: Nutrientes del medio Boldp. 37
- en frasco de 250 mL, C. Cultivo en frasco de 800 mL, D. Cultivo en frasco de 3 litrosp. 38
- Figura 8. Cultivo de Bold y NPK (T-15) a un volumen de 16Lp. 39
- Figura 9. Cultivo de Haematococcus pluvialis en 250 Lp. 40
- 2018)p. 41
- de 20L, B. Floculación del cultivop. 42
- biomasa obtenida luego de la centrifugaciónp. 43
- Figura 13. Bandejas con la biomasa para su secadop. 44
- Figura 14. dispositivo de extracción Soxhletp. 45
- Figura 15. Recuperación del hexano atreves del rotaevaporadorp. 45
- Figura 16. Preparación del compatibilizador y el rellenop. 47
- Figura 17. Espectroscopio NICOLET iS5p. 48
- promediop. 49
- H. pluvialis Observada a 100xp. 50
- los medios Bold y NPK(T-15)p. 52
- en NPK (T-15)p. 53
- Haematococcus pluvialis cultivada en medio Boldp. 54
- Haematococcus pluvialis cultivada en medio NPK (T-15)p. 54
- crecimiento y tiempo de duplicaciónp. 69
- Anexo 2. Prueba de verificación de T-student para la densidad y tasa de crecimientop. 69
- Anexo 3. Prueba de verificación de Mann-Whitney para el tiempo de duplicaciónp. 69